1x1 image pixel for data collection
ChromaTide™ Texas Red™-12-dUTP
ChromaTide™ Texas Red™-12-dUTP
Invitrogen™

ChromaTide™ Texas Red™-12-dUTP

Les nucléotides dUTP, OBEA-dCTP et UTP marqués au ChromaTide™ Molecular Probes™ peuvent être utilisés pour synthétiser des sondes d’ADN marquéesAfficher plus
Have Questions?
RéférenceQuantité
C763125 μl
Référence C7631
Prix (EUR)
866,00
Each
En stock
Ajouter au panier
Quantité:
25 μl
Recurring order eligible. Learn more »
Prix (EUR)
866,00
Each
Ajouter au panier
Ask our AI about this Product
Les nucléotides dUTP, OBEA-dCTP et UTP marqués au ChromaTide™ Molecular Probes™ peuvent être utilisés pour synthétiser des sondes d’ADN marquées sans avoir besoin de nucléotides marqués avec des radioisotopes dangereux et coûteux. Ces nucléotides peuvent être incorporés à l’aide de techniques de biologie moléculaire standard ; les sondes marquées peuvent ensuite être utilisées dans le cadre de protocoles d’hybridation in situ, de microarray ou de transfert. Les nucléotides marqués au colorant ChromaTide™ sont disponibles en différentes couleurs de fluorescence pour faciliter l’analyse multicolore.

Spécifications des nucléotides marqués au ChromaTide™ :
• Ex / Em du colorant : Texas Red™-12-dUTP (595 / 615 nm)
• Longueur du liant alkynylamino : 12 atomes


Méthodes pour incorporer les nucléotides ChromaTide™ dans les sondes
• Traduction de coupure
• Marquage aléatoire des amorces
• Marquage de l’extrémité avec une désoxyribonucléotidyl transférase terminale
• Transcription inverse
• Amplification par PCR


Voir Méthodes pour incorporation enzymatique des dUTP ChromaTide™ pour prendre connaissance des directives spécifiques à chaque méthode.

Les colorants fluorescents Alexa Fluor™ et BODIPY™ constituent d’excellentes sondes
Les sondes fabriquées avec des nucléotides marqués peuvent être utilisées pour des techniques multicolores telles que l’hybridation in situ et les puces d’hybridation. Nos conjugués colorants exclusifs BODIPY™ et Alexa Fluor™ sont exceptionnellement brillants et photostables et fondamentalement insensibles au pH. Le profil d’émission étroit des colorants BODIPY™ permet d’assurer un chevauchement spectral minimal. Les colorants Alexa Fluor™ sont hautement solubles dans l’eau, tout comme les sondes d’ADN qui en résultent, ce qui en fait des marqueurs de choix pour la fluorescence dans le cadre d’une hybridation in situ.

Les liants longs améliorent les performances
Les nucléotides dUTP et UTP ChromaTide™ sont modifiés en position C-5 de l’uridine grâce à un liant alkynylamino unique qui fournit un bras espaceur entre le nucléotide et le colorant afin de réduire les interactions entre eux. Le chiffre associé au nom du produit, par exemple, le “12” dans fluorescéine-12-dUTP, indique la longueur nette du bras espaceur, en atomes. Ces bras espaceurs permettent d’obtenir des conjugués plus brillants et une accessibilité accrue aux haptènes pour les réactifs de détection secondaires.

Pour une liste complète de nos réactifs ChromaTide™ : Nucléotides marqués au Molecular Probes ChromaTide™ et au aha — Tableau 8.5.
Pour plus d’informations sur ces réactifs de marquage, consultez le paragraphe Marquage des oligonucléotides et des acides nucléiques — section 8.2 du manuel Molecular Probes™.

Usage exclusivement réservé à la recherche. Non utilisé à des fins thérapeutiques ou diagnostiques humaines ou animales.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Méthode d’étiquetageMarquage direct
Marqueur ou colorantTexas Red™
Quantité25 μl
Conditions d’expéditionGlace humide
Concentration1 mM
Gamme de produitsChromaTide™, Texas Red™
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Conserver au congélateur (entre -5 et -30°C) à l’abri de la lumière.
Have questions about this product? Ask our AI assisted search.
Generating response
This is an AI-powered search and may not always get things right. You can help us make it better with a thumbs up or down on individual answers or by selecting the “Give feedback" button. Your search history and customer login information may be retained by Thermo Fisher and processed in accordance with our Privacy Notice.

Figures

Customers who viewed this item also viewed



Documentation et téléchargements

Certificats

Numéro de lotCertificate TypeDateCatalog Number(s)
2725323Certificate of Analysis08 juil. 2024C7631
2561644Certificate of Analysis05 déc. 2022C7631
2559168Certificate of Analysis28 sept. 2022C7631
2383809Certificate of Analysis19 janv. 2022C7631
2291575Certificate of Analysis24 déc. 2020C7631
5 résultats affichés, recherchez un certificat spécifique ci-dessus

Safety Data Sheets

Foire aux questions (FAQ)

You can try to purify the ChromaTide labeled probe with an appropriate spin column-based method to remove unincorporated ChromaTide nucleotides. Ethanol precipitation may not efficiently remove the unincorporated ChromaTide nucleotides, so a spin column will need to be used.

- Check the base-to-dye ratio to determine the level of incorporation of the ChromaTide nucleotides. Since fluorescent detection may be affected by underlabeling, overlabeling, instrument sensitivity, or other factors, the base-to-dye ratio is a better indicator of incorporation efficiency.
- ChromaTide nucleotides may not have been incorporated well in the enzymatic labeling reaction. Make sure that the enzymatic method used is compatible with the particular fluorescent ChromaTide nucleotide, since some methods may not be appropriate for all applications. You may also need to further optimize the enzymatic incorporation method, for example by optimizing enzyme concentration, incubation time, concentration, and ratio of labeled and unlabeled nucleotides. For PCR, a lower fidelity polymerase may give higher incorporation rates; however, incorporation rates will be generally low using PCR.
- Check the fluorescent filter used for detection to make sure it is compatible with the dye. You can also test a small drop of the undiluted fluorescent ChromaTide nucleotide in your filter to make sure you can image the dye alone before it is conjugated to the oligonucleotide. The fluorescence emission of Alexa Fluor 647 is not visible by eye and will require a far-red imaging system for detection.

No, they are not cell permeant so they are only suitable for in vitro incorporation methods. The fluorescent dyes and phosphate groups are too highly charged to allow the nucleotides to penetrate the membrane of an intact cell. Nonfluorescent nucleosides without phosphates such as EdU, EU, or BrdU can be used for live cell nucleic acid incorporation studies.

The base-to-dye ratio is determined by measuring the absorbance of the nucleic acid at 260 nm and the absorbance of the dye at its absorbance maximum. Using the extinction coefficients for the appropriate dye and nucleic acid, you can then calculate the base-to-dye ratio for the labeled nucleic acid using the Beer-Lambert law. Detailed instructions can be found in these product manuals: (http://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/td07604.pdf, http://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/td07605.pdf).

The average incorporation is one dye for every 100-150 bases, so the ChromaTide fluorescently labeled nucleotides typically produce the lowest labeling rates of the nucleic acid labeling methods we offer.

Citations et références (8)

Citations et références
Abstract
Condensation of plasmid DNA with polylysine improves liposome-mediated gene transfer into established and primary muscle cells.
Authors:Vitiello L, Chonn A, Wasserman JD, Duff C, Worton RG
Journal:Gene Ther
PubMed ID:9156800
'Cationic liposomes provide a means to introduce genes into cells both ex vivo and in vivo. In the past few years their use has been described in several tissues, e.g. lungs, liver, endothelium, brain. In this study we evaluated a commercially available poly-cationic liposome formulation in delivering a reporter gene ... More
Inheritance of a pre-inactivated paternal X chromosome in early mouse embryos.
Authors:Huynh KD, Lee JT
Journal:Nature
PubMed ID:14661031
'In mammals, dosage compensation ensures equal X-chromosome expression between males (XY) and females (XX) by transcriptionally silencing one X chromosome in XX embryos. In the prevailing view, the XX zygote inherits two active X chromosomes, one each from the mother and father, and X inactivation does not occur until after ... More
Substantial background reduction in ligase-based apoptosis detection using newly designed hairpin oligonucleotide probes.
Authors:Didenko VV, Boudreaux DJ, Baskin DS
Journal:Biotechniques
PubMed ID:10631490
DNA methylation promotes Aurora-B-driven phosphorylation of histone H3 in chromosomal subdomains.
Authors:Monier K, Mouradian S, Sullivan KF,
Journal:J Cell Sci
PubMed ID:17164288
Confinement of enzymatic reactions to nuclear and chromosomal subdomains regulates functional organization of the nucleus. Aurora-B kinase regulates cell-cycle-dependent phosphorylation of chromosomal substrates through sequential localization to a series of sites on chromosomes and the mitotic spindle. In G2 nuclei, Aurora-B recruitment to heterochromatin restricts histone H3S10 phosphorylation to a ... More
Spectral karyotyping combined with locus-specific FISH simultaneously defines genes and chromosomes involved in chromosomal translocations.
Authors:Tonon G, Roschke A, Stover K, Shou Y, Kuehl WM, Kirsch IR
Journal:Genes Chromosomes Cancer
PubMed ID:10719373
Genes that play roles in malignant transformation have often been found proximate to cancer-associated chromosomal breakpoints. Identifying genes that flank chromosomal reconfigurations is thus essential for cancer cytogenetics. To simplify and expedite this identification, we have developed a novel approach, based on simultaneous spectral karyotyping and fluorescence in situ hybridization ... More
8 total citations

Partager la référence catalogue, le nom ou le lien.

1x1 image pixel for data collection