ARES™ Alexa Fluor™ 647 DNA Labeling Kit
ARES™ Alexa Fluor™ 647 DNA Labeling Kit
Invitrogen™

ARES™ Alexa Fluor™ 647 DNA Labeling Kit

Das ARES™ Alexa Fluor™ DNA-Markierungskits bietet eine vielseitige, zweistufige Methode zur Markierung von DNA mit unseren Alexa Fluor™ Farbstoffen. ImWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
A216761 kit
Katalognummer A21676
Preis (EUR)
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Das ARES™ Alexa Fluor™ DNA-Markierungskits bietet eine vielseitige, zweistufige Methode zur Markierung von DNA mit unseren Alexa Fluor™ Farbstoffen. Im ersten Schritt wird ein aminmodifiziertes Nukleotid mit herkömmlichen enzymatischen Markierungsmethoden in die DNA integriert. Im zweiten Schritt wird die aminmodifizierte DNA mit unserem firmeneigenen aminreaktiven Alexa Fluor™ 647-Farbstoff chemisch markiert. Die markierten Sonden können für Fluoreszenz--in-situ-Hybridisierung (FISH) und Mikroarray-Verfahren verwendet werden. Wir bieten ARES™ Alexa Fluor™ DNA-Markierungskits in fünf fluoreszierenden Farben an. Jedes Kit enthält ausreichend Reagenzien für 5 bis 10 Markierungsreaktionen von je 1 bis 5 µg DNA.

ARES™ Alexa Fluor™ Markierungskit – Technische Daten:
• Farbstoff (Ex/Em): Alexa Fluor™ 647 (650/670 nm)
• Erzielt eine einheitlichere, konsistentere Markierung als Verfahren für die enzymatische Integration markierter Nukleotide
• Produziert in der Regel einen Farbstoff pro 12–20 Basen
• Optimal für FISH und Mikroarrays


Einheitlichere Markierung mit ARES™ Markierungskits
ARES™ Alexa Fluor™ Markierungskits verwenden eine zweistufige Markierungstechnologie – Nick-Translation zur enzymatischen Integration eines aminmodifizierten Nukleotids (Aminoallyl dUTP) mit anschließender chemischer Markierung mit Alexa Fluor™ Farbstoffen. Diese Methode erreicht eine Homogenität und Konsistenz der Markierung, die mit konventioneller enzymatischer Integration markierter Nukleotide nur schwer zu erreichen ist.
Wir bieten diese zweistufige Markierungstechnologie auch in unseren FISH Tag™ DNA- und FISH Tag™ RNA-Kits an, die eine vollständige Workflow-Lösung für FISH-Anwendungen bieten, indem sie alle Reagenzien, die für eine Sondensynthese, -markierung, -aufreinigung erforderlich sind, und ein Anti-Fade-Reagenz enthalten, das das Signal während der Fluoreszenzmikroskopie schützt.

Weitere Optionen für die Nukleinsäuremarkierung
Zur Überprüfung verschiedener Optionen für die Nukleinsäuremarkierung (einschließlich DNA- und RNA-FISH) siehe Labeling Oligonucleotides and Nucleic Acids (Markierung von Oligonukleotiden und Nukleinsäuren) – Abschnitt 8.2 im Handbuch für Molecular Probes™.

Nur für Forschungszwecke. Nicht für therapeutische oder diagnostische Zwecke bei Menschen und Tieren.
Nur für Forschungszwecke. Darf nicht für diagnostische Verfahren eingesetzt werden.
Specifications
Mit Marker oder FarbstoffJa
MarkierungsmethodeIndirekte Markierung
ProduktlinieARES™, Alexa Fluor™
ProdukttypDNA-Markierungskit
Menge1 kit
VersandbedingungRaumtemperatur
NachweisverfahrenFluoreszenz
EndprodukttypSonden (markierte DNA), cDNA (markiert)
FormatKit
Labeling TargetDNA (allgemein), cDNA
Marker oder FarbstoffAlexa Fluor™ 647
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Bei -5 bis -30 °C lagern und vor Licht schützen.
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Abbildungen

Fluoreszenzspektren

Fluorescence spectra

Dokumente und Downloads

Zertifikate

Chargen-Nr.Certificate TypeDateCatalog Number(s)
3136457Certificate of Analysis13. Apr. 2025A21676
3023519Certificate of Analysis18. Okt. 2024A21676
2604338Certificate of Analysis24. Mai 2023A21676
2465106Certificate of Analysis05. Jan. 2023A21676
2328932Certificate of Analysis02. Juni 2021A21676
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Sicherheitsdatenblätter

Product Information

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Different preparations of RNA will certainly give different results. Most of the time, the mRNA is significantly degraded. The enzymatic incorporation of aminoallyl-dUTP (AA-dUTP) should not differ from reaction to reaction. If there are differences, it has to be due to the RNA or the method. AA-dUTP incorporation is no different than that of a dye-nucleotide conjugate, and should be more efficient and uniform. Here are a couple of suggestions:

1) cDNA may have been lost prior to labeling. Add 1 µL of glycogen (molecular biology grade), containing 10-20 µg, to the cDNA before precipitating it with ethanol.

2) Make sure to add sodium acetate as the salt and not ammonium acetate. After pelleting the cDNA, resuspend it in 5 µL water.

3) If generating long cDNAs, it will help to heat-denature the sample. Heat it at 95°C for 5 minutes and then put it on ice for a few minutes. Then centrifuge it for a few minutes just prior to the labeling reaction.

4) You want the tube to be at room temperature for the labeling reaction. Add the 3 µL of buffer and mix it in. Then add the dye and vortex it vigorously for at least 15 seconds.

Unfortunately, Alexa Fluor 633 does not label nucleic acids well because of the dye's chemical structure. Furthermore, DNA probes labeled with Alexa Fluor 633 do not form stable hybrids in nucleic acid hybridization assays.

An ARES-labeled oligonucleotide should survive at 95°C for 5 minutes.

Long-term storage for the ARES-labeled probes can be done in just about any kind of buffer, TE, formamide, hybridization buffer, or ethanol. We suggest using your normal storage conditions as long as you protect the probes from light. ARES conjugates are very stable.

At the same dye-to-base ratio, Alexa Fluor dyes exhibit higher intensity and reduced self-quenching at higher labeling ratios.

Zitierungen und Referenzen (9)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Induction of Id1 and Id3 by latent membrane protein 1 of Epstein-Barr virus and regulation of p27/Kip and cyclin-dependent kinase 2 in rodent fibroblast transformation.
Authors:Everly DN, Mainou BA, Raab-Traub N
Journal:J Virol
PubMed ID:15564458
Latent membrane protein 1 (LMP1), the Epstein-Barr virus oncoprotein, activates NF-kappaB, phosphatidylinositol 3-kinase, mitogen-activated protein kinase, and c-Jun N-terminal kinase signaling. To determine global transcriptional changes induced by LMP1 in epithelial cells, genomic analysis of C33A cells stably expressing LMP1 was performed. Relatively few genes were induced by LMP1. Expression ... More
Effects of rottlerin on silica-exacerbated systemic autoimmune disease in New Zealand mixed mice.
Authors:Brown JM, Schwanke CM, Pershouse MA, Pfau JC, Holian A,
Journal:Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol
PubMed ID:16040631
'Environmental crystalline silica exposure has been associated with formation of autoantibodies and development of systemic autoimmune disease, but the mechanisms leading to these events are unknown. Silica exposure in autoimmune-prone New Zealand mixed (NZM) mice results in a significant exacerbation of systemic autoimmunity as measured by increases in autoantibodies and ... More
Development of microarray and multiplex polymerase chain reaction assays for identification of serovars and virulence genes in Salmonella enterica of human or animal origin.
Authors:Peterson G, Gerdes B, Berges J, Nagaraja TG, Frye JG, Boyle DS, Narayanan S,
Journal:J Vet Diagn Invest
PubMed ID:20622226
'Salmonella enterica is an important enteric pathogen consisting of many serovars that can cause severe clinical diseases in animals and humans. Rapid identification of Salmonella isolates is especially important for epidemiologic monitoring and controlling outbreaks of disease. Although immunologic and DNA-based serovar identification methods are available for rapid identification of ... More
Specific discrimination of three pathogenic Salmonella enterica subsp. enterica serotypes by carB-based oligonucleotide microarray.
Authors:Shin HH, Hwang BH, Seo JH, Cha HJ,
Journal:
PubMed ID:24185846
'It is important to rapidly and selectively detect and analyze pathogenic Salmonella enterica subsp. enterica in contaminated food to reduce the morbidity and mortality of Salmonella infection and to guarantee food safety. In the present work, we developed an oligonucleotide microarray containing duplicate specific capture probes based on the carB ... More
Multiplex detection of RNA expression in Drosophila embryos.
Authors:Kosman D, Mizutani CM, Lemons D, Cox WG, McGinnis W, Bier E
Journal:Science
PubMed ID:15297669
We present a fluorescence-based, multiplex in situ hybridization method that permits the simultaneous detection of five differently labeled antisense RNA probes and up to seven differ-ent transcripts in a single Drosophila embryo. We also show that it should be possible to increase the number of detected transcripts substantially with nascent ... More
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