AbC™ Anti-Rat/Hamster Bead Kit

Q: Does the AbC Anti-Rat/Hamster Bead Kit bind IgG2a kappa or IgG1 lambda rat with the same affinity?

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Katalognummer	Menge
A10389	1 Kit

Katalognummer A10389

Preis (EUR)

373,00

Each

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Menge:

1 Kit

Preis (EUR)

373,00

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Das AbC™ Anti-Rat/Hamster Antibody Compensation Bead Kit bietet ein konsistentes, genaues und anwenderfreundliches Verfahren für die Einstellung der Durchflusszytometriekompensation bei der Verwendung von fluorochromkonjugierten Ratten- oder Hamsterantikörpern mit einem beliebigen Laser.

• Spezies-Reaktivität– zur Verwendung mit allen Isotypen von Ratten- und Hamster-Antikörper-Konjugaten
• Maximale Laserkompatibilität– zur Verwendung mit allen Lasern geeignet

Eine genaue Kompensation ist für eine effektive mehrfarbige Analyse in der Durchflusszytometrie von entscheidender Bedeutung. Häufig sind zellbasierte Kompensationskontrollen jedoch nicht vollständig wirksam, da viele Antigene nicht hochexprimiert sind und schwach gefärbte Zellen zu ungenauen Kompensationseinstellungen führen können. Das AbC™ Anti-Rat/Hamster Bead Kit wurde entwickelt, um dieses Problem zu beheben.

Auswahlhilfe für alle Kompensations-Beads der Durchflusszytometrie anzeigen.

Funktionsweise
Jedes Kit enthält Polystyrol-Mikrokugeln, die fluoreszierende Antikörperkonjugate binden können (positive Kompensationsbeads) oder inert sind (negative Kompensationsbeads). Nach dem Mischen mit einem fluorophorkonjugierten Ratten- oder Hamster-Antikörper bieten die beiden Komponenten eine eindeutige Positivkontrolle mit hohem Signal und eine geeignete negative Population, mit der dann die Kompensation unabhängig von der Intensität der Zellen im eigentlichen Experiment richtig eingestellt werden kann.

Spezies-Reaktivität
Das AbC™ Anti-Rat/Hamster Bead Kit eignet sich ideal für die Kompensation mit allen Isotypen von Ratten- (IgG1, IgG2a, IgG2b, IgG2c, IgM) und Hamster- (armenisches IgG und syrisches IgG) Immunglobulinen.

Maximale Laserkompatibilität
Alle AbC™ Kompensations-Bead-Kits eignen sich ideal für die Verwendung mit jeder Anregungsquelle, einschließlich des 405-nm-Lasers, der in der Vergangenheit aufgrund seiner Autofluoreszenz höhere Hintergrundsignale geliefert hat als andere auf dem Markt erhältliche Kits.

Nur für Forschungszwecke. Darf nicht für diagnostische Verfahren eingesetzt werden.

Specifications

NachweisverfahrenFluoreszent, Fluoreszent

Durchmesser (metrisch)6 μm

Emissionbeliebige Laser (UV bis 633/635)

Zur Verwendung mit (Geräte)Durchflusszytometer, Durchflusszytometer

FormatRöhrchen, Tube

Menge1 Kit

VersandbedingungRaumtemperatur, Raumtemperatur

FärbekonfigurationOberfläche, Oberfläche

ProduktlinieCompenFlow™, Molecular Probes™

ProdukttypKompensations-Beads

Unit SizeEach

Inhalt und Lagerung

Enthält 1 Fläschchen AbC™ Anti-Ratte/Hamster Capture-Beads und 1 Fläschchen mit negativen Beads.
Bei 2 bis 8 °C lagern.

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Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Does the AbC Anti-Rat/Hamster Bead Kit bind IgG2a kappa or IgG1 lambda rat with the same affinity?

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I am performing flow cytometry. My compensation matrix has values over 100. That's not possible is it?

It is possible. But if you have a lot of values over 100, you probably need to look at the voltages that you are using for your data collection.

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I’ve been told that I need to compensate my data for flow cytometry analysis. What does that mean?

By running single-color controls, it is possible to remove signal of one fluorophore that spills over into the collection channel for another fluorophore.

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What kind of controls do I need for flow cytometry?

For compensation, you need to prepare a singly stained sample (or compensation beads) for each color parameter that you are using. In addition, we recommend that you use FMO (flow minus one) controls. These are controls in which you label cells or beads with every color in your panel, omitting one. Make one FMO control for each color. These controls are important for helping you properly set gates on your data.

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Why should I worry about compensation in flow cytometry analysis?

In a perfect world, the fluorescence emission profile for each individual fluorophore would be a very intense, narrow peak, well separated from all other emission peaks. In reality, organic dyes and fluorescent proteins have broad emission peaks, and compensation must be employed (during or after data acquisition) to correctly assign fluorescence signal to each fluorophore. Compensation is important because it removes fluorescent signal from overlapping spectra so you know that the signal you see is only the signal from the fluorophore of interest.

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Abbildungen

Flow cytometry analysis of mouse splenocytes stained with FITC-conjugated rat anti-mouse CD4 (Cat # MCD0401) and Phycoerythrin-conjugated rat anti-mouse CD8a antibody (Cat. no. RM2204). Compensation controls set up using AbC™ anti Rat/Hamster Bead Kit (Cat # A10389)