Novex™ Tris-Glycine Mini Protein Gels, 4–20%, 1.0 mm, WedgeWell™ format
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Novex™ Tris-Glycine Mini Protein Gels, 4–20%, 1.0 mm, WedgeWell™ format
Invitrogen™

Novex™ Tris-Glycine Mini Protein Gels, 4–20%, 1.0 mm, WedgeWell™ format

WedgeWellフォーマットのInvitrogen Novex Tris-Glycineミニゲルは、再現性のあるさまざまなタンパク質の分離を、2倍のローディング容量で高分離能バンドに分離できるポリアクリルアミドゲルです。
製品番号(カタログ番号)ウェル数量
XP04205BOX15ウェル10ゲル/箱
XP04200PK210ウェル2ゲル/箱
XP04200BOX10ウェル10ゲル/箱
XP04202BOX12ウェル10ゲル/箱
製品番号(カタログ番号) XP04205BOX
価格(JPY)
29,500
10 gels (1 box)
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ウェル:
15ウェル
数量:
10ゲル/箱
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WedgeWellフォーマットのInvitrogen Novex Tris-Glycineミニゲルは、再現性のあるさまざまなタンパク質の分離を、2倍のローディング容量で高分離能バンドに分離できるポリアクリルアミドゲルです。Novex Tris-Glycine Mini Gelは、従来のLaemmliタンパク質電気泳動をベースとするゲルであり、Laemmliサンプルおよび泳動バッファーを使用できます。

Novex Tris-Glycineゲル、WedgeWellフォーマットの特長は、以下のとおりです:
品質保持期間の延長—4℃で最大6カ月保存できます
多様性—天然タンパク質および変性タンパク質アッセイで使用できます
くさび型ウェル—最大2倍多いサンプル量を簡単にロードできます
高速な泳動条件—一定の電圧で、60分以内にタンパク質を迅速に分離できます

お客様の実験に合った適切なゲルをお選びください
WedgeWellフォーマットのNovex Tris-Glycineゲルは、6%~18%のさまざまな固定濃度、および4~12%、4~20%、8~16%、および10~20%の範囲のグラジエントで提供します。10ウェル、12ウェル、15ウェルのなど、当社のさまざまなウェルフォーマット、およびさまざまなパックサイズからお選びいただけます。

天然または変性形態でタンパク質を泳動できます
Novexトリス-グリシンゲル(WedgeWellフォーマット)には、SDSが含まれておらず、天然または変性形態でタンパク質を泳動するのに使用できます。変性タンパク質には、Novex Tris-Glycine SDSサンプルバッファー(LC2676)およびNovex Tris-Glycine SDS泳動バッファー(LC26755)の使用をお勧めします。天然タンパク質の場合、Novex Tris-Glycineネイティブサンプルバッファー(LC2673)およびNovex Tris-Glycineネイティブ泳動バッファー(LC2672)の使用を推奨します。

簡単に使用可能
Novex Tris-Glycineゲル(WedgeWellフォーマット)は、革新的なくさび形のウェルを持ち、他の1.0 mm厚のゲルに比べて最大で2倍のサンプルロード量をもたらします。また、くさび型ウェルには大きな開口部があるため、サンプルのロードが容易になります。

タンパク質を膜に転写する場合は、Invitrogenミニブロットモジュール(B1000)使用した従来のウェット転写用にNovex Tris-Glycine転写バッファー(LC3675)の使用をお勧めします。転写は、Invitrogen Power Blotterを使用した迅速なセミドライ転写、またはiBlot 2ゲル転写装置(IB21001)使用した迅速なドライ転写でも実行できます。

For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
仕様
Gel Thickness1.0 mm
長さ(メートル法)8 cm
分離モード分子量
製品ラインNovex™、WedgeWell™
数量10ゲル/箱
推奨アプリケーション変性、天然
サンプル充填量最大35 µL
品質保持期間7カ月
出荷条件湿氷
保存要件2~8℃にて保存してください。冷凍不可。
幅(メートル法)8 cm
使用対象 (装置)Mini Gel Tank, XCell SureLock Mini-Cell
ゲル濃度4 ~ 20%
ゲルサイズミニ
ゲルタイプTris-Glycine Plus
分離範囲20~200 kDa
分離タイプ変性、天然
ウェル15ウェル
Unit Size10 gels (1 box)
Western Workflow Products
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よくあるご質問(FAQ)

Is it okay to use protein gels past their expiration date?

We do not recommend using gels past their expiration date because over time, the polyacrylamide hydrolyzes to acrylic acid and ammonia and this will affect the resolution of the proteins. Breakdown of polyacrylamide matrix is identified by:
- Ghost bands and doublets, seen first in the high molecular weight proteins
- Smiling of dye front across the gel, with bands in outer lanes becoming very slanted - proteins run slower there due to change in pH and pore size over time.


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Can I run your protein gels overnight?

This is not really recommended, but it is always possible to increase run time by lowering the voltage of the run. In general, the relationships are linear - i.e., decreasing voltage by half will double the run time.

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Do I need to increase the voltage when I run a 1.5 mm protein gel versus a 1.0 mm gel?

If you are running the gel at constant voltage, you do not need to increase the voltage regardless of the thickness of the gel.

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Why do you recommend running your protein gels at constant voltage?

Using constant voltage allows the current and power to decrease during the run, providing a safety margin in case of a break in the system. Having lower power is a safety benefit and will also decrease the chances of experiencing an overheating of the gel. Further, the constant voltage setting does not need adjustment to account for differences in number or thickness of gels being run.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within ourProtein Gel 1D Electrophoresis Support Center.

I am transferring a Tris-Glycine gel using constant voltage and the current reading is way over the expected starting current. Can you offer some suggestions?

The most common cause of abnormally high current is the transfer buffer. If the transfer buffer is too concentrated, this leads to increased conductivity and current. High current may also occur if Tris-HCl is accidentally substituted for the Tris base required in the transfer buffer. This will again result in low buffer pH and lead to increased conductivity and current and subsequently, overheating. We recommend checking the transfer buffer and its reagent components and re-diluting or remaking the buffer.

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ドキュメントおよびダウンロード

証明書

ロット番号Certificate TypeDateCatalog Number(s)
21123040Certificate of Analysis2022年1月11日XP04200BOX
19121990Certificate of Analysis2020年1月03日XP04205BOX
19041240Certificate of Analysis2019年5月01日XP04200BOX
18110640Certificate of Analysis2018年11月21日XP04200BOX
18110630Certificate of Analysis2018年11月21日XP04202BOX
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Safety Data Sheets

こちらの製品には複数の製品番号が設定されています。

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